Preparación de sangre

INTRODUCCIÓN

Al teñir las muestras corremos algunos riesgos como que las proteínas se coagulen, o la solubilización de los hidratos de carbono y las grasas.
Con esta práctica, al no usar ningún tipo de tinción, podremos ver la estructura natural de las células, o los cambios estructurales en procesos patológicos.

PARA REALIZAR LA PRÁCTICA.

Esta práctica la podemos hacer con sangre venosa o con sangre capilar.

MATERIAL.

• Microscopio
• Portas y cubres
• Papel de filtro
• Con sangre capilar: lancetas, gasas, alcohol 70º y capilares
• Con sangre venosa: pipetas pasteur, tubo de ensayo, gradilla y bolsa de hemodonación.

MUESTRA.

Sangre capilar, o venosa.

PROCEDIMIENTO

Con sangre capilar: 

Haremos la punción en la yema de los dedos 

- Desinfectamos la zona con una gasa humedecida en alcohol, y dejamos secar. 

- Hacemos la punción con la lanceta, y desechamos la primera gota, ya que está contaminada con el alcohol. Para ello retiramos la gota con una gasa. 

- Hacemos una leve presión en el dedo y recogemos la sangre con un capilar.

- Dejamos caer unas dos gotas de sangre del capilar en un porta, y cubrimos con el cubre.

- Colocamos el porta en la platina del microscopio, y con el objetivo de 40x observamos la muestra.

Con sangre venosa:

Cogemos una porción de sangre venosa de una bolsa de hemodonación

- Llenamos una pequeña parte del tubo de ensayo con sangre de la bolsa de hemodonación

- Colocamos el tubo de ensayo en una gradilla, y con la pipeta Pasteur cogemos una pequeña cantidad de sangre 

- Vertimos unas dos gotas en el portaobjetos y cubrimos con el cubreobjetos.

- Colocamos el porta en la platina y observamos la muestra con el objetivo de 40x

LECTURA DE LOS RESULTADOS.

  

Con esta práctica podemos ver los glóbulos rojos (hematíes) plaquetas, y glóbulos blancos (leucocitos).